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微生物宏組學(xué)通關(guān)技能

原創(chuàng):?Frasergen?菲沙基因

微生物是地球上最古老的生命形式之一,它們體形微小,有些不為我們?nèi)庋鬯l(fā)現(xiàn),結(jié)構(gòu)簡(jiǎn)單,卻無(wú)處不在,盡管很多時(shí)候不被我們所注意,但卻非常重要,是整個(gè)自然生態(tài)鏈中不可或缺的一部分。高通量測(cè)序技術(shù)的快速發(fā)展及成本的降低,使得微生物研究更加深入和廣泛,研究成果不斷涌現(xiàn)于各大期刊雜志,包含Science、Nature、Cell等國(guó)際頂尖學(xué)術(shù)期刊。

如何選擇不同的微生物宏組學(xué)解決方案?

基于高通量測(cè)序研究微生物宏組學(xué)的解決方案:擴(kuò)增子測(cè)序、宏基因組測(cè)序、宏轉(zhuǎn)錄組測(cè)序,那么如何根據(jù)研究目的選擇不同的宏組學(xué)解決方案呢?

?如果我們想知道環(huán)境中存在哪些微生物?每種微生物的豐度情況如何?

答:擴(kuò)增子測(cè)序(16S/18S/ITS可變區(qū)擴(kuò)增子、全長(zhǎng)16S/18S/ITS)

?如果我們不僅想知道環(huán)境中存在哪些微生物,還想知道微生物有哪些功能?

答:二代宏基因組測(cè)序、三代宏基因組測(cè)序

?如果我們進(jìn)一步想知道這些環(huán)境微生物正在行使什么功能?

答:宏轉(zhuǎn)錄組測(cè)序

擴(kuò)增子測(cè)序

擴(kuò)增子測(cè)序是對(duì)特定長(zhǎng)度的PCR產(chǎn)物或者捕獲片段進(jìn)行測(cè)序,16S、18S、ITS rDNA 被認(rèn)為是最適于細(xì)菌、真核微生物、真菌系統(tǒng)分類(lèi)鑒定的指標(biāo)。

 

宏基因組?(Metagenome)

以環(huán)境中全部細(xì)菌、真菌、古菌等的基因組遺傳物質(zhì)DNA為研究對(duì)象,進(jìn)行de novo組裝,以基因?yàn)檠芯繂卧?,進(jìn)行物種多樣性、基因結(jié)構(gòu)、差異基因和功能基因等的研究。

環(huán)境微生物應(yīng)用領(lǐng)域

宏組學(xué)測(cè)序適用于各種自然環(huán)境及人或動(dòng)物微生態(tài)的研究,下面讓我們來(lái)看看它的運(yùn)用領(lǐng)域:

常見(jiàn)樣本類(lèi)型

宏組學(xué)的應(yīng)用非常廣泛,涉及各種各樣的環(huán)境類(lèi)型,土壤、水體、污泥、食品發(fā)酵液、小鼠腸道、反芻動(dòng)物瘤胃等;人腸道微生物的研究中,宏組學(xué)的運(yùn)用也非常的廣泛,涉及各種各樣的樣本類(lèi)型,胃黏膜、唾液、肺部灌洗液、分泌物、糞便等。

參考文獻(xiàn)

1.????Ni J, Shen T C D, Chen E Z, et al. A role for bacterial urease in gut dysbiosis and Crohn’s disease[J]. Science Translational Medicine, 2017, 9(416): eaah6888.

2.????Wilck N, Matus M G, Kearney S M, et al. Salt-responsive gut commensal modulates T H 17 axis and disease[J]. Nature, 2017, 551(7682): 585.

3.????Thompson L R, Sanders J G, McDonald D, et al. A communal catalogue reveals Earth’s multiscale microbial diversity[J]. Nature, 2017.

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16S與宏基因組的區(qū)別

 

16S rDNA測(cè)序及宏基因組測(cè)序都是研究微生物的重要方法,那么這兩者到底有什么區(qū)別呢?什么情況下選擇16S測(cè)序?什么情況下選擇做宏基因組測(cè)序?

測(cè)序原理不同

16S rDNA是編碼原核生物核糖體小亞基rDNA的DNA序列,具有高度的保守性。該序列具有10個(gè)保守區(qū)域和9個(gè)可變區(qū)域(V1-V9),其中保守區(qū)域在細(xì)菌間差異不大,高可變區(qū)具有屬或種的特異性。

16S rDNA的結(jié)構(gòu)

對(duì)16S rDNA某個(gè)高可變區(qū)進(jìn)行測(cè)序,用于研究環(huán)境微生物中細(xì)菌或古菌的群落結(jié)構(gòu)多樣性。通過(guò)對(duì)某一段高變區(qū)序列(V4區(qū)或V3-V4區(qū))進(jìn)行PCR擴(kuò)增后進(jìn)行測(cè)序,得到1500bp左右的序列。

16S的測(cè)序原理

宏基因組測(cè)序則是將微生物基因組DNA隨機(jī)打斷成350bp的小片段,然后在片段兩端加入通用引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增測(cè)序,再通過(guò)組裝的方式,將小片段拼接成較長(zhǎng)的序列。

宏基因組測(cè)序原理

 

研究?jī)?nèi)容不同

16S測(cè)序主要研究群落的物種組成、物種間的進(jìn)化關(guān)系以及群落的多樣性;宏基因組測(cè)序在16S測(cè)序分析的基礎(chǔ)上還可以進(jìn)行基因和功能層面的深入研究:

16S

宏基因組??
物種組成?? √ ?
物種豐度
基因預(yù)測(cè)?? X
功能注釋?? X
代謝通路?? X
功能分析?? X

 

鑒定到的物種及深度不同

??在界水平上,宏基因組有細(xì)菌、古菌、真菌和病毒的信息,而16S只有細(xì)菌和古菌的信息。

??在種水平上,宏基因組測(cè)得的物種種類(lèi)高于16S,是因?yàn)?6S這一測(cè)序技術(shù)的限制,鑒定到種水平的很少。

??在門(mén)、綱、目、科、屬水平上,宏基因組測(cè)得的物種種類(lèi)沒(méi)有16S多,因?yàn)?6S選的是某一可變區(qū),可測(cè)到低豐度的物種的種類(lèi)遠(yuǎn)遠(yuǎn)多于宏基因組,因此16S測(cè)得的物種種類(lèi)在門(mén)、綱、目、科、屬分類(lèi)水平上更豐富。

??對(duì)于16S測(cè)序而言,任何一個(gè)高變區(qū)或幾個(gè)高變區(qū),盡管具有很高的特異性,但是某些物種(尤其是分類(lèi)水平較低的種水平)在這些高變區(qū)可能非常相近,能夠區(qū)分它們的特異性片段可能不在擴(kuò)增區(qū)域內(nèi)。

??宏基因組測(cè)序通過(guò)對(duì)微生物基因組隨機(jī)打斷,并通過(guò)組裝將小片段拼接成較長(zhǎng)的序列。因此,在物種鑒定過(guò)程中,宏基因組測(cè)序具有較高的優(yōu)勢(shì)。

 

研究重點(diǎn)不同

16S研究側(cè)重于解答群落結(jié)構(gòu),而宏基因組測(cè)序則側(cè)重于解答菌落的功能。

一句話(huà)總結(jié):宏基因組測(cè)序研究是16S測(cè)序分析的升華與補(bǔ)充。

研究微生物群落結(jié)構(gòu)的組成差異及特征,選擇16S測(cè)序;研究微生物的群落結(jié)構(gòu)、物種分類(lèi)、基因功能及代謝網(wǎng)絡(luò),選擇宏基因組測(cè)序;當(dāng)然我們還可以采用16S與宏基因組測(cè)序聯(lián)合的研究思路,即大樣本量進(jìn)行16S測(cè)序,根據(jù)差異物種,選部分代表樣品進(jìn)行宏基因組測(cè)序。

全長(zhǎng)16S rDNA測(cè)序

 

16S rDNA長(zhǎng)度大約為1500bp左右,三代平臺(tái)的PacBio Sequel的平均讀長(zhǎng)為8-12Kb,因此結(jié)合該平臺(tái)可以成功測(cè)序獲得16S/18S的全長(zhǎng)序列,全長(zhǎng)序列信息不僅能提高物種鑒定的分辨率,還能提高樣本中微生物組成鑒定的精確度,從而能更加真實(shí)的還原樣本中微生物的群落結(jié)構(gòu)。

全長(zhǎng)16S產(chǎn)品優(yōu)勢(shì)

高通量--能同時(shí)分析群落中所有的微生物

高數(shù)據(jù)質(zhì)量--采用PacBio的CCS模式,對(duì)序列自我矯正,數(shù)據(jù)一致性準(zhǔn)確率高

高分辨率--分析16SrDNA全長(zhǎng),分類(lèi)精準(zhǔn)到種。

 

二代擴(kuò)增子

 

三代全長(zhǎng)擴(kuò)增子

樣本要求 無(wú)嚴(yán)格樣品要求,只要能擴(kuò)出相應(yīng)片段
擴(kuò)增區(qū)域 1-2個(gè)高變區(qū),如16S的V4/V5 全長(zhǎng)序列
測(cè)序平臺(tái) Illumina?MiSeq/HiSeq PacBio?Sequel
測(cè)序數(shù)據(jù)量 ≥30,000?Tags ≥?5,000?CCS
分析內(nèi)容 微生物群落組成與豐度
結(jié)果準(zhǔn)確性 一般 準(zhǔn)確度高
成本 較高

 

經(jīng)典案例分析[1]

樣品來(lái)源:模擬菌群(已知單菌混合)和湖水樣本

測(cè)序策略:PacBio RSII(FL-16S,PhyloTags)

Illumina MiSeq(16S-V4區(qū),V4 iTags)

分析思路:

①模擬菌群驗(yàn)證PhyloTags準(zhǔn)確性;

②湖水菌群樣本PhyloTags和V4 iTags比較

③ PhyloTags提高菌群分辨率的原因解析

(1)模擬群落驗(yàn)證SMRT測(cè)序

研究人員使用含有23個(gè)細(xì)菌參考基因組的模擬群落得到一系列PacBio 16s rRNA基因序列數(shù)據(jù),并將SMRT技術(shù)產(chǎn)生的全長(zhǎng) 16s rRNA基因序列稱(chēng)為PhyloTags。5個(gè)模擬群落的高質(zhì)量PhyloTags數(shù)據(jù)成功分成22個(gè)OTU,每個(gè)OTU的16s rRNA基因相似度高于97%。通過(guò)質(zhì)量分選出來(lái)的質(zhì)量最好的PhyloTag對(duì)模擬基因組16s rRNA基因的相似度是99.5%。另外,5個(gè)PhyloTag技術(shù)重復(fù)的相關(guān)性非常好,相互之間的相關(guān)系數(shù)均達(dá)到96%以上,并且與鳥(niǎo)槍法打斷的meta序列具有很強(qiáng)相關(guān)性。在模擬群落實(shí)驗(yàn)中,PhyloTags的結(jié)果可以與傳統(tǒng)iTag測(cè)序結(jié)果相媲美。

 

(2)Sakinaw湖水菌群分析

Sakinaw湖含有豐富的微生物類(lèi)群,研究人員選取8個(gè)不同深度的湖水進(jìn)行采樣,分別對(duì)這些樣本進(jìn)行PhyloTag和V4 iTag分析。結(jié)果表明,V4 iTags數(shù)據(jù)中有0.2-4.1%的微生物在門(mén)水平上無(wú)法區(qū)分,而PhyloTags則能在門(mén)水平上將這些微生物完全區(qū)分。比較各個(gè)深度的PhyloTag和V4 iTag數(shù)據(jù),發(fā)現(xiàn)深度在50-120m時(shí),兩者在門(mén)水平上的微生物分類(lèi)差異明顯。在環(huán)境樣本中,短讀長(zhǎng)測(cè)序數(shù)據(jù)在復(fù)雜群類(lèi)區(qū)分中失去優(yōu)勢(shì),而PhyloTags則能在屬水平上對(duì)菌群進(jìn)行區(qū)分。

(3)PhyloTags提高菌群進(jìn)化分類(lèi)的分辨率

為了評(píng)估擴(kuò)增子長(zhǎng)度對(duì)群體分析的影響,研究人員隨機(jī)抽取了Sakinaw樣本中的1818條PacBio FL序列和它們對(duì)應(yīng)的二代測(cè)序產(chǎn)生的V4區(qū)域序列進(jìn)行成組比較。結(jié)果表明,在多個(gè)實(shí)例中相同的序列對(duì)表現(xiàn)出來(lái)不同的鑒定結(jié)果,產(chǎn)生這些結(jié)果的原因是16s rRNA基因的突變位點(diǎn)分布并不均勻,高估或低估這些突變都將影響微生物群落的分類(lèi)。

綜上所述,PacBio全長(zhǎng)16S rDNA測(cè)序可提供更準(zhǔn)確的物種分類(lèi)和更多的物種鑒定,在系統(tǒng)發(fā)育、群落鑒定和代謝通路預(yù)測(cè)方面都更有優(yōu)勢(shì)。

 

參考文獻(xiàn)

1.Singer E, Bushnell B,Coleman-Derr D, et al. High-resolution phylogenetic microbial community profiling[J]. The ISME journal(2016).

 

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